Lab. 7:
Respiración Celular
Objetivos:
- Estudiar la producción de CO2
durante la fermentación anaeróbica de varios carbohidratos.
- Medir la respiración aeróbica
en varios organismos.
- Distingir entre respiración celular
aeróbica y anaeróbica en términos de ATP, oxígeno y qiomiosmosis.
- Definir y comparar
fermentación, glucólisis, ciclo de ácido cítrico y sistema de transporte
de electrones y cuáles son los reactivos y productos finales.
Destrezas:
Trabajo
individual y grupal. Se aprenderá otra
destreza de laboratorios, titulación, que envuelve conceptos químicos. Se aprenderán técnicas de laboratorio. Se practicarán destrezas de comunicación
escrita y se reforzarán los conceptos de investigación científica.
Introducción:
Los
términos y conceptos con los cuales los estudiantes deben familiarizarse son:
diferencias entre organismos autótrofos y heterótrofos (y sus diferencias y
similitudes al consegir energía), reacciones Redox, glucólisis (qué ocurre y
sus productos y dónde ocurre), respiración celular (y su reacción química) y el
transporte de electrones. Se debe
diferenciar entre respiración aeróbica y anaeróbica. Se puede usar diagrama y tabla para comparar procesos. Este material se discute a fondo en conferencia
por lo cual NO deben dar mucha teoría, ya que se cubrirá en clase. La carpeta de transparencias incluye algunas
transparencias que puede usar (pero serán las mismas que verán en clase.)
Experimentos:
Parte
1: Fermentación en levaduras
- Preparar la suspensión de
levaduras (antes del laboratorio: 1 pqte de levadura, 2 gr de sacarosa y
yn poco de melaza en 100 ml de agua).
- Rotular 4 tubos y añadir y
mezclar lo siguiente:
Tubo 1: 2 ml de sacarosa y 2 ml de
levadura
Tubo 2: 2 ml de galactosa y 1 ml de
levadura
Tubo 3: 1 ml de maltosa y 1 ml de levadura
Tubo 4: 1 ml de lactosa y 1 ml de levadura
- Para cada uno de los tubos,
llenar una pipeta graduada hasta desbordar con la solución del tubo,
tapando el extremo con el dedo mientras se sella el otro lado con
parafilm.
- Invertir en tubo de ensayo.
Anotar
la producción de CO2 en cada pipeta a intérvalos de 20 minutos.
Parte
2: Respiración en plantas y animales
*
dependiendo de cuantos peces y caracoles se tengan disponibles se dividirá el lab
en 2-4 grupos. NO dejen morir los peces
y los caracoles después del experimento.
Hay que diluir la solución de NaOH a 0.0025M (1:100).
- Rotular 5 beakers de 150 ml
y añadir lo siguiente a cada uno:
B1: 100 ml de agua y 1 pez
B2: 25 ml de agua y 2 caracoles
B3: 100 ml de agua y 5 cm de Elodea
B4: 100 ml de agua y 5 cm de Elodea
B5: 100 ml de agua
- Tapar con papel de aluminio
todos, excepto el 4 que se cubrirá por completo.
- Colocar el 3 cerca de una
bombilla
- Después de 30 min, remover
los organismos
- Llenar pipeta de titulación
con NaOH
- A 25 ml de cada beaker
añadir 4 gotas de fenolftaleína
- Titular hasta obsservar
color rosa pálido persistente
8. Calcular la
producción de CO2
Manejo
del tiempo:
- Introducción – 10 min
- Parte 1: Experimento A - 40
min
- Experimento 1C - 30 min
- Parte 2: Experimento A – 40
min
- Experimento 2B – (empezar
mientras se realiza el 2A y presentar resultados luego) – 25 min
- Discusión y prueba corta –
20 min
- Recoger el lab – 5 min
Materiales
para el laboratorio 6:
Parte
1:
En
mesa de instructor:
- Levadura
- azucar
- melaza
- beaker de 200 ml
- parafilm
- Soluciones de sacarosa,
galactosa, maltosa y lactosa
- anti-cloro para los peces
En
mesa de estudiante:
- gradilla
- 4 tubos de ensayo
- 4 pipetas graduadas
- 2 pipetas de 1 ml
- 4 pipetas pasteur
- lápiz de cera
Parte
2 (por grupo)
- 5 beakers de 150 ml
- probeta para titular
- 5 beakers pequeños
En
mesa de instructor:
- Papel de aluminio
- Fenolftaleína
- Solución de NaOH 0.25 M
(para diluir 1:100)
- peces
- caracoles
- Elodea
Materiales
del almacén:
- Soluciones de sacarosa,
galactosa, maltosa y lactosa
- peces (50)
- caracoles (100)
- levadura (20 paquetes)
- Solución de NaOH 0.25 M
- Elodea
- melasa
- azucar
- anti-cloro para peceras