BIOL  5005

Anatomía Vegetal  ( y Microscopía)

 

 

 

Profesor:         Carlos A. Muñoz                    Horas de Oficina:

Oficina:           Celis-222                                           L, Mi, V;  9:30-11:45am y

Laboratorio:   Física  316                                          1:00-4:30pm, por cita

 

 

Texto:   No se requerirá libro de texto; sin embargo, se recomiendan las referencias clásicas a continuación.

 

Referencias:  

            Esau, K. 1953.  Plant Anatomy.  John Wiley & Sons, New York. 735pp.

            Esau, K. 1977. Anatomy of Seed Plants. John Wiley & Sons, New York. 550pp.

            Jensen, W. 1962. Botanical Histochemistry.  W.H. Freeman & Co., San   

                        Francisco. 408pp.

            Johansen, D. A. 1940. Plant Microtechnique. McGraw-Hill Book Co., New York

                        523pp.

            O’ Brien T. P. and M. E. McCully. 1981 The Study of Plant Structure:

                        Principles and Selected Methods.  Termarcarphi Pty Ltd, Melbourne,

                        Australia.

 

Manual de Laboratrorio:   Manual de Microtécnica para Tejidos Vegetales por : C. A. Muñoz y F. Jordán (disponible en Student Aid Center - SAC).

 

Descripción del curso:

 

            Estudio de los tejidos simples y compuestos de las plantas vasculares.  Estudio de las características de las células de parénquima, esclerénquima y colénquima, así como los elementos que componen los tejidos del xilema y el floema.  Estudio de las técnicas de preparación de especímenes, tipos de microscopía y métodos de cuarto oscuro y computarizados para la documentación fotográfica de observaciones anatómicas.  Estas técnicas encuentran aplicación no solo en el estudio de anatomía de plantas, sino también de microorganismos y de animales (incluyendo biología humana).

 

Prerrequisitos:  BIOL  3435 (Botánica Elemental) o BIOL 3417  (Biología Organismal Vegetal)   

 

Objetivos:  Al finalizar el curso los estudiantes podrán:

1.     Utilizar eficazmente un microscopio de calidad de investigación, ya sea en óptica convencional de campo claro, microscopía, de fluorescencia, u óptica de Contraste de Interferencia  Diferencial (Nomarski).

 

2.     Utilizar eficazmente equipos accesorios de microscopía, incluyendo el micrótomo rotativo, el ultramicrótomo, el hacedor de cuchillos LKB, el horno de vacío, el potenciómetro, la platilla de calentamiento y otros equipos, para tinción de muestras.

 

3.     Procesar muestras vegetales para análisis microscópicos, incluyendo su fijación deshidratación, infiltración e incrustamiento en plásticos o parafina, seccionamiento, tinción y montaje permanente.

 

4.     Documentar fotográficamente las observaciones anatómicas utilizando el sistema fotográfico automizado de Olympus y realizando el desarrollo de negativos (película) e impresión de positivos (fotos), ya  sea mediante técnicas convencionales de cuarto oscuro, o mediante técnicas computadorizadas.

 

5.     Identificar los tipos de células y tejidos vegetales presentados en fotomicrografías.

 

 

Temas de Conferencias:

 

1.     cuerpo vegetal (repaso)

2.     parotoplasto (organelos subcelulares)

3.     pared celular

4.     meristemos: apicales, laterales e intercalarios

5.     epidermis*

6.     parénquima*

7.     colénquima*

8.     esclerénquima *

9.     xilema*

10.  floema*

11.  laticíferos

12.  peridermis

13.  anatomía de tallos

14.  anatomía de hojas

15.  anatomía deraíces

16.  anatomía de flores

17.  anatomía de frutos

18.  anatomía de semillas

 

*La discusión de los diferentes tejidos vegetales estará a cargo de estudiantes trabajando en parejas, quienes harán una presentación oral sobre las principales características del tejido asignado.  Cada pareja deberá construir por lo menos un modelo tridimensional de alguna célula perteneciente al tejido a su cargo, que ilustre los detalles estructurales que caracterizan a ese tipo de célula.  El modelo será utilizado como demonstración durante la presentación oral.

 

 

Ejercicios y Temas de Laboratorios:

 

1.     técnicas de preparación de especímenes

2.     cortes histológicos de hojas tallos y raíces de Coleus

3.     microscopía convencional de campo claro

4.     tinción de cromosomas (“squashes”)

5.     corte de tejidos leñosos

6.     maceración de tejidos

7.     microscopía de fluorescencia

8.     óptica Nomarski

9.     aclaramiento de tejidos

10.  localización de tubos polínicos en estigmas

11.  fotomicroscopía

12.  técnicas de cuarto oscuro

13.  técnicas  computadorizadas de procesamiento de imágenes

14.  caracterización anatómica de una planta de Puerto Rico (PROYECTO)

 

 

Evaluación:

                                                                                                 Puntos             % (aprox)

                        Pruebas prácticas de Laboratorio                   100                      30

                        Presentación Oral**                                          50                     ~15

                        Modelo Tridimensional (Tipos de Células)**  20                       ~5

                        Portafolio (PROYECTO FINAL)                     70                       20

                        Examen Final                                                  100                       30

                                                                                 Total:     340ptos              100

 

 

**Aunque la construcción del modelo será calificada en forma conjunta para ambos miembros de la pareja, las presentaciones orales serán evaluadas individualmente.